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Evaluation der osteoinduktiven Potenz von gentechnisch modifizierten BMP-2-Varianten

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Mund-, Kiefer- und Gesichtschirurgie Aims and scope Submit manuscript

Zusammenfassung

Fragestellung

Durch gentechnische Modifikationen der N-terminalen Aminosäuresequenz von BMP-2 lässt sich die Heparinbindung und damit die lokale Verweildauer am Implantationsort gezielt beeinflussen. Zwei Mutanten mit verstärkter (T3, T4) und eine Mutante mit nahezu aufgehobener Heparinbindung (EHBMP-2) sollten auf ihre Osteoinduktivität in vivo überprüft und mit dem Wildtyp von BMP-2 verglichen werden.

Methoden

Unterschiedliche Konzentrationen (0,25–4 µg) der Proteine wurden auf zylindrische Kollagenträger (Durchmesser 5 mm, Höhe 10 mm) aufgebracht und in die Oberschenkelmuskulatur implantiert. Die Knochenbildung wurde mittels radiologischer Verlaufskontrollen quantifiziert und nach 28 Tagen histologisch charakterisiert.

Ergebnisse

Durch die Aufhebung der Heparinbindung wird eine deutliche Reduktion der Osteoinduktivität in vivo bewirkt. Die Verstärkung der Heparinbindung führt dagegen zu einer Steigerung der Knocheninduktion, die beobachtete Knochenbildung findet schneller und in größerem Ausmaß statt.

Schlussfolgerung

Durch gentechnische Modifikationen ist es gelungen, erstmalig BMP-Mutanten herzustellen, die eine verstärkte Bindung an Komponenten der extrazellulären Matrix (Heparin) aufweisen. Durch die hierdurch verlängerte Verweildauer am Implantationsort besitzen diese Mutanten eine gegenüber dem Wildtyp gesteigerte Osteoinduktivität.

Abstract

Background

The alteration of the N-terminal amino acid sequence of BMP-2 allows modification of heparin binding of the new protein. This leads to a change in the local retention time at the site of implantation. Mutants with increased (T3, T4) and with no binding (EHBMP-2) to heparin were assessed for their osteoinductivity in vivo and compared with the wild type BMP-2.

Methods

Cylindrical collagenous carriers (diameter = 5 mm, height = 10) were loaded with different concentrations (0.25–4 µg) of the proteins. Following intramuscular implantation into the hind legs, the bone formation was measured in radiographic follow-ups. After 28 days the newly formed bone was characterized histologically.

Results

Elimination of the heparin binding leads to massive reduction in osteoinductivity. On the other hand, an increase in the heparin binding leads to enhancement in the osteoinductive properties, resulting in faster bone formation with a higher yield.

Conclusion

It could be shown for the first time that modifications of BMP-2 by gene technology can lead to proteins with enhanced binding to components of the extracellular matrix. The resulting prolonged retention time at the implantation site results in an increased osteoinductivity compared with the wild type.

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Literatur

  1. Aono A, Hazama M, Notoya K, et al (1995) Potent ectopic bone-inducing activity of bone morphogenetic protein-4/7 heterodimer. Biochem Biophys Res Commun 210:670–677

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  2. Carrington JL, Reddi AH (1991) Parallels between development of embryonic and matrix-induced endochondral bone. Bioessays 13:403–408

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  3. Celeste AJ, Iannazzi JA, Taylor RC, Hewick RM, Rosen V, Wang EA, Wozney JM (1990) Identification of transforming growth factor beta family members present in bone-inductive protein purified from bovine bone. Proc Natl Acad Sci USA 87:9843–9847

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  4. Hammonds RG Jr, Schwall R, Dudley A, et al (1991) Bone-inducing activity of mature BMP-2b produced from a hybrid BMP-2a/2b precursor. Mol Endocrinol 5:149–155

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  5. Hazama M, Aono A, Ueno N, Fujisawa Y (1995) Efficient expression of a heterodimer of bone morphogenetic protein subunits using a baculovirus expression system. Biochem Biophys Res Commun 209:859–866

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  6. Heldin CH, Miyazono K, ten Dijke P (1997) TGF-beta signaling from cell membrane to nucleus through SMAD proteins. Nature 390:465–471

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  7. Huggins CB (1931) The formation of bone under the influence of epithelium of the urinary tract. Arch Surg 22:377–408

    Google Scholar 

  8. Israel DI, Nove J, Kerns KM, Kaufman RJ, Rosen V, Cox KA, Wozney JM (1996) Heterodimeric bone morphogenetic proteins show enhanced activity in vitro and in vivo. Growth Factors 13:291–300

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  9. Kübler N (1995) Osteoinduktive Implantate—experimentelle Grundlagen und klinische Anwendung in der Mund-, Kiefer- und Gesichtschirurgie. Habilitationsschrift, Universität Würzburg

  10. Kübler NR, Würzler K, Reuther JF, Faller G, Sieber E, Kirchner T, Sebald W (1999) EHBMP-2: erstes BMP-Analog mit osteoinduktiven Eigenschaften. Mund Kiefer GesichtsChir 3 (Suppl 1):134–139

    Article  PubMed  Google Scholar 

  11. Levander G (1938) A study of bone regeneration. Surg Gynecol Obstet 67:705–714

    CAS  Google Scholar 

  12. Massague J (1998) TGF-beta signal transduction. Annu Rev Biochem 67:753–791

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  13. Miyazono K, Kusanagi K, Inoue H (2001) Divergence and convergence of TGF-beta/BMP signaling. J Cell Physiol 187:265–276

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  14. Neuhof H (1917) Fascial transplantation into visceral defects: an experimental and clinical study. Surg Gynecol Obstet 25:383–387

    Google Scholar 

  15. Nickel J, Dreyer M, Sebald W (2002) Deciphering the binding code of BMP-receptor interaction. In: Vukicevic S (ed) Bone morphogenetic proteins. Birkenhäuser Basel, pp 61–86

  16. Nomura S, Hirota S, Nakase T, Hirakawa K, Takaoka K (1994) Expression and localization of BMP-4 mRNA during embryogenesis and fracture healing. 1st International Conference on Bone Morphogenetic Proteins, Baltimore

  17. Oldham JB, Lu L, Zhu X, et al (2000). Biological activity of rhBMP-2 released from PLGA microspheres. J Biomech Eng 122:289–292

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  18. Reddi AH, Wientroub S, Muthukumaran N (1987) Biologic principles of bone induction. Orthop Clin North Am 18:207–212

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  19. Ruppert R, Hoffmann E, Sebald W (1996) Human bone morphogenetic protein 2 contains a heparin-binding site which modifies its biological activity. Eur J Biochem 237:295–302

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  20. Sampath TK, Reddi AH (1981) dissociative extraction and reconstitution of extracellular matrix components involved in local bone differentiation. Proc Natl Acad Sci USA 78:7599–7603

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  21. Sampath TK, Muthukumaran N, Reddi AH (1987) Isolation of osteogenin, an extracellular matrix-associated, bone-inductive protein, by heparin affinity chromatography. Proc Natl Acad Sci USA 84:7109–7113

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  22. Scheufler C, Sebald W, Hulsmeyer M (1999) Crystal structure of human bone morphogenetic protein-2 at 2.7 A resolution. J Mol Biol 287:103–115

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  23. Suzuki A, Nishimatsu S, Shoda A, Takebayashi K, Murakami K, Ueno N (1993) Biochemical properties of amphibian bone morphogenetic protein-4 expressed in CHO cells. Biochem J 291:413–417

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  24. Takaoka K, Yoshikawa H, Hashimoto J, et al (1993) Purification and characterization of a bone-inducing protein from a murine osteosarcoma (Dunn type). Clin Orthop 292:329–336

    PubMed  Google Scholar 

  25. Takaoka K, Yoshikawa H, Hashimoto J, Ono K, Matsui M, Nakazato H (1994) Transfilter bone induction by Chinese hamster ovary (CHO) cells transfected by DNA encoding bone morphogenetic protein-4. Clin Orthop 300:269–273

    PubMed  Google Scholar 

  26. Urist MR (1965) Bone: formation by autoinduction. Science 150:893–899

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  27. Urist MR, Silverman BF, Buring K, Dubuc FL, Rosenberg JM (1967) The bone induction principle. Clin Orthop 53:243–283

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  28. Urist MR, Strates BS (1971) Bone morphogenetic protein. J Dent Res 50:1392–1406

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  29. Urist MR (1981) New bone formation induced in postfetal life by bone morphogenic protein. In: Becker RO (ed) Mechanisms of growth control. Thomas, Springfield, Illinois, pp 406–434

  30. Urist MR, DeLange RJ, Finerman GA (1983) Bone cell differentiation and growth factors. Science 220:680–686

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  31. Vukicevic S, Latin V, Chen P, Batorsky R, Reddi AH, Sampath TK (1994) Localization of osteogenic protein-1 (bone morphogenetic protein-7) during human embryonic development: high affinity binding to basement membranes. Biochem Biophys Res Commun 198:693–700

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  32. Wang EA, Rosen V, D’Alessandro JS, et al (1990) Recombinant human bone morphogenetic protein induces bone formation. Proc Nat Acad Sci USA, pp 2220–2224

  33. Woo BH, Fink BF, Page R, et al (2001) Enhancement of bone growth by sustained delivery of recombinant human bone morphogenetic protein-2 in a polymeric matrix. Pharm Res 18:1747–1753

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  34. Wozney JM, Rosen V, Celeste AJ, et al (1988) Novel regulators of bone formation: molecular clones and activities. Science 242:1528–1534

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  35. Wrana JL (2000) Regulation of Smad activity. Cell 100:189–192

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  36. Würzler KK (2003) Aktuelle Aspekte zur Regeneration von Knochengewebe in ausgedehnten Defekten. Habilitationsschrift, Universität Würzburg

  37. Würzler KK, Käding C, Kübler NR, Sebald W, Reuther JF (2004) EXKK (extrahiertes xenogenes Knochenkollagen)—ein neues Knochenersatzmaterial mit besonderer Eignung als Träger für induktive Proteine. Teil A: Feingewebliche Untersuchungen im heterotopen Implantatlager. BIOmaterialien (in Druck)

    Google Scholar 

  38. Würzler KK, Käding C, Kübler NR, Sebald W, Reuther JF (2004) EXKK (extrahiertes xenogenes Knochenkollagen)—ein neues Knochenersatzmaterial mit besonderer Eignung als Träger für induktive Proteine. Teil B: Untersuchungen im orthotopen Lager bei Defekten kritischer Größe. BIOmaterialien (in Druck)

    Google Scholar 

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Würzler, K.K., Emmert, J., Eichelsbacher, F. et al. Evaluation der osteoinduktiven Potenz von gentechnisch modifizierten BMP-2-Varianten. Mund Kiefer GesichtsChir 8, 83–92 (2004). https://doi.org/10.1007/s10006-004-0528-x

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